Topl0F’細胞中的電轉化及文庫儲存

[方法]
1．加2～3ul純化的連接反應物（大值為0.3ug DNA）到80ul的*0F’電轉化感受態(tài)細胞中，輕輕搖晃混合。使用30ng（2ul）的pUCl9控制電轉化效率。
2．將細胞+DNA懸浮液轉移到已冷卻的0．2 cm細胞電轉化管，并冰浴3分鐘。
3，將Gene Pulser Plus電穿孔儀設置為2．5kV脈沖，電容器設為25uF，脈沖控制器設為200ns。
4．用紙巾干燥電轉化管，然后將它放在電轉化箱中，使用一個脈沖（寄存時間常量必須為4．5～5．0毫秒）。
5．立即加lmlLB到電擊管中，打散細胞，然后將細胞懸浮液轉移到15ml聚丙烯試管中。
6．在37℃下振蕩，使細胞能夠表達抗抗生素的標記。
7．組合所有的電轉化樣品，通過100ul適當稀釋后均勻地倒在小LBAT平板上來確定文庫的大小，用pUCl9控制電轉化能產生大約3×107的轉化產物。
8．在20℃，2500g下旋轉組合電轉化樣品15分鐘，在0．5XLBAT起始體積中打散沉淀顆粒，將1 ml細胞懸浮液涂抹在每一平方LBAT平板上。
9．在37℃過夜孵育該板。
10．在每個平方板上灑上10ml LBAT以獲得文庫，，用無菌延輾機敲碎細胞，將已打散的細胞轉移到50ml聚丙烯試管中。
11．重復實驗方案12．10，用5m1 LBAT除去板上留下的細胞。
12．在600nm測量細胞懸浮液的光密度（OD），如果有必要，可以將濃縮的細胞系稀釋到每毫升LBAT 40 OD600nm單位。
13．制備甘油菌，將5ml的甘油加到5ml的濃縮細胞系中，混合后均等地分到1m1聚丙烯冷凍管中，在-70℃冷凍及儲存，后細胞濃度將是每毫升20 OD600nm位，這大約是每毫升1．6×1010個細胞。