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    • 鮑曼不動桿菌(AB)熒光-PCR法檢測試劑盒
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    • 鮑曼不動桿菌(AB)熒光-PCR法檢測試劑盒

    50T 鮑曼不動桿菌(AB)熒光-PCR法檢測試劑盒

    參考價
    面議
    具體成交價以合同協議為準
    • 型號50T
    • 品牌
    • 所在地上海市
    • 更新時間2021-07-23
    • 廠商性質經銷商
    • 入駐年限9
    • 實名認證已認證
    • 產品數量9300
    • 人氣值292882
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    上海莼試生物技術有限公司Shanghai C-reagent Biotechnology  Co. Ltd.  專業服務于生命科學領域,擁有分子生物學、醫學、藥學、化學等方面的科研技術團隊,經營科研生化試劑、分析試劑、實驗耗材,推出技術先進、質量穩定的科研產品。為全國乃至于世界各地科研機構、工業、電子、醫療、科技等領域的客戶,提供系統的產品資源及配套技術服務。推出十幾個種類產品線,部分產品接受定制服務!



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    鮑曼不動桿菌(AB)熒光-PCR法檢測試劑盒客戶只需提供樣品和待檢測名稱即可。由我們提取RNA,設計并合成引物,完成熒光定量PCR實驗以及后續數據分析,提供實驗報告給您。
    鮑曼不動桿菌(AB)熒光-PCR法檢測試劑盒 產品詳情

    PCR實驗步驟:
    典型的PCR由(1)高溫變性模板;(2)引物與模板退火;(3)引物沿模板延伸三步反應組成一個循環,通過多次循環反應,使目的DNA得以迅速擴增。
    其主要步驟是:
    將待擴增的模板DNA置高溫下(通常為93-94)使其變性解成單鏈;
    人工合成的兩個寡核苷酸引物在其合適的復性溫度下分別與目的基因兩側的兩條單鏈互補結合,兩個引物在模板上結合的位置決定了擴增片段的長短;
    耐熱的DNA聚合酶(Taq酶)在72將單核苷酸從引物的3’端開始摻入,以目的基因為模板從5’→3’方向延伸,合成DNA的新互補鏈。

    具有下列特點:
    1.
    即開即用,用戶只需要提供樣品 DNA 模板,操作簡單,定量準確快速。
    2.
    引物經過優化,特異性強。預期的 PCR 產物長度為 560 bp。
    3. PCR mix
    中含上樣染料,PCR 后可以直接上樣電泳。
    4.
    提供陽性對照,便于分析試驗結果。

    產品名稱

    鮑曼不動桿菌(AB)熒光-PCR法檢測試劑盒

    規格

    50T

    貨號

    CP99938

    特點優勢:
    1.
    特異性:所有產品使用的引物均經過詳盡的生物信息學分析,經過GenBank及自建龐大數據庫的比對,確保所用的每一條引物均為種屬或血清型特異的基因序列區段,可實現對細菌種屬及血清型的特異檢測,特異性均達到100%
    2.   
    重現性:該系列所有產品均經過大量實驗菌株的驗證,重現性為100%。
    3.   
    靈敏性:該系列產品可實現對檢測菌的高靈敏檢測,當樣品中細菌的濃度達到103cfu/ml時,可實現對其的直接檢測,無需繁瑣的增菌過程。
    4.   
    實用性:檢測范圍廣,涵蓋了對人體危害較為嚴重的17種呼吸道及腸道致病菌,可實現對臨床樣品及其他環境取樣的快速檢測,整個檢測過程為3-4個小時。
    5.   
    優勢1:序列資源豐富,除GenBank公布的序列外,公司還進行了大量菌株的序列破譯,從理論上保證所選引物具有良好的保守性和特異性。
    6.   
    優勢2:該系列試劑盒均經過大量的保守性及特異性實驗驗證,憑借公司擁有的豐富的菌種資源,每一種檢測試劑盒均經過了20余種標準菌株和臨床菌株的保守性驗證及40余種近緣標準菌株和臨床菌株的特異性驗證,確保在使用過程中不會出現任何的假陽性及假陰性報告結果。
    反應五要素:
    參加PCR反應的物質主要有五種即引物、酶、dNTP、模板和Mg2+
    引物:引物是PCR特異性反應的關鍵,PCR 產物的特異性取決于引物與模板DNA互補的程度。理論上,只要知道任何一段模板DNA序列, 就能按其設計互補的寡核苷酸鏈做引物,利用PCR就可將模板DNA在體外大量擴增。設計引物應遵循以下原則:
    引物長度: 15-30bp,常用為20bp左右。
    引物擴增跨度: 200-500bp為宜,特定條件下可擴增長至10kb的片段。
    引物堿基:G+C含量以40-60%為宜,G+C太少擴增效果不佳,G+C過多易出現非特異條帶。ATGC最好隨機分布,避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。
    避免引物內部出現二級結構,避免兩條引物間互補,特別是3'端的互補,否則會形成引物二聚體,產生非特異的擴增條帶。
    引物3'端的堿基,特別是最末及倒數第二個堿基,應嚴格要求配對,以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。
    引物中有或能加上合適的酶切位點, 被擴增的靶序列最好有適宜的酶切位點, 這對酶切分析或分子克隆很有好處。
    引物的特異性:引物應與核酸序列數據庫的其它序列無明顯同源性。
    引物量:每條引物的濃度0.11umol10100pmol,以引物量產生所需要的結果為好,引物濃度偏高會引起錯配和非特異性擴增,且可增加引物之間形成二聚體的機會。

    熒光定量PCR實驗步驟:
    取凍存已裂解的細胞,室溫放置5分鐘使其*溶解。
    兩相分離 1mlTRIZOL試劑裂解的樣品中加入0.2mllvfang,蓋緊管蓋。手動劇烈振蕩管體15秒后,1530孵育23分鐘。412000rpm離心15分鐘。離心后混合液體將分為下層的紅色酚lvfang相,中間層以及無色水相上層。RNA全部被分配于水相中。水相上層的體積大約是勻漿時加入的TRIZOL試劑的60%。
    RNA沉淀 將水相上層轉移到一干凈無RNA酶的離心管中。加等體積異丙醇混合以沉淀其中的RNA,混勻后1530孵育10分鐘后,于412000rpm 離心10分鐘。此時離心前不可見的RNA沉淀將在管底部和側壁上形成膠狀沉淀塊。
    RNA清洗 移去上清液,每1mlTRIZOL試劑裂解的樣品中加入至少1ml75%乙醇(75%乙醇用DEPCH2O配制),清洗RNA沉淀。混勻后,47000rpm離心5分鐘。
    RNA干燥 小心吸去大部分乙醇溶液,使RNA沉淀在室溫空氣中干燥5-10分鐘。
    溶解RNA沉淀 溶解RNA時,先加入無RNA酶的水40μl用槍反復吹打幾次,使其*溶解,獲得的RNA溶液保存于-80待用。 1)紫外吸收法測定先用稀釋用的TE溶液將分光光度計調零。然后取少量RNA溶液用TE稀釋(1:100)后,讀取其在分光光度計260nm280nm處的吸收值,測定RNA溶液 濃度和純度。

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